Recolección de
muestras de cultivos de papa
Recolectar los tubérculos e inducir a su pudrición colocándolos en una
bolsa plástica y poniendo a incubación durante 2 días hasta que los tubérculos
estén blandos y con olor a pudrición.
Procesamiento de muestras de tejido
vegetal
Seleccionar fragmentos de tejido con presencia de síntomas, lavar,
desinfectar en una solución de hipoclorito de sodio al 5% por
dos minutos y macerar en un mortero estéril y diluirlos con agua
destilada estéril para finalmente
sembrarlos en agar peptona e incubarlos por 48 horas a 26 °C.
Aislamiento de bacterias
Observar las colonias con morfología y características de Erwinia carotovora.
Esta bacteria en agar peptona presenta unas colonias redondas, pequeñas,
levantadas, ligeramente translúcidas.
Purificación del fago
Día 1: preparar
y autoclavar medios de cultivo
Día 2: -
Diluir las muestras de suelo, tomar 2 g de la muestra y colocar 25 ml de agua destilada estéril.
-
Filtrar la dilución.
-
Con el filtrado, realizar una
dilución 1:10 en SM buffer
-
Incubar a 4 C por 24 horas
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Sembrar la bacteria hospedadora
previamente aislada, en tubos de 15 ml conteniendo 5 ml del medio de
enriquecimiento (MNM enriquecido con 10 mM de MgSO4)
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Incubar las bacterias con
agitación a 37 C por 24 horas.
Día 3: -
Centrifugar 25 ml de la muestra durante 25 min a 15000 rpm.
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Filtrar el sobrenadante a través
de filtros de 0,45 y 0,2 µm previamente humedecidos con agua destilada estéril.
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Diluir el inóculo bacteriano en
medio fresco
- 100µl en 400 µl (t1, t2, t3)
- 200 µl en 300 µl (t4, t5, t6)
-
Los tubos t1, t2, t4 y t5 incubar
a 37 C durante 3 horas y los tubos t3 y t6, incubar a 37 C durante 24 horas.
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Medir en el espectrofotómetro
(600nm) los tubos incubados por 3 horas.
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A los tubos t1 y t4 adicionar 5 ml
de la muestra, y a los tubos t2 y t5 adicionar agua destilada estéril.
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Incubar 37 C durante 24 horas.